A Magyar Állatorvosi Kamara
szakmai és információs magazinja

Atópiás bőrgyulladásban szenvedő kutyák vizsgálata intradermalis bőrteszttel (IDT)

Dr. Lénárt Zoltán 2020-ban diplomázott a Budapesti Állatorvostudományi Egyetemen. Külföldi szakmai gyakorlatát a Litvániai Élettudományi Egyetem kaunasi kampuszán töltötte. Végzés után két és fél évet egy Budapest melletti kisállatrendelőben dolgozott általános betegellátásban. 2022 nyarától a debreceni Vezér Állategészségügyi Centrumban ambuláns és ügyeleti betegellátás mellett főként kutyák és macskák bőrgyógyászati problémáival foglalkozik. Rendszeres résztvevője külföldi és hazai bőrgyógyászati továbbképzéseknek. Tagja az ESVD-nek (European Society of Veterinary Dermatology), illetve pártoló tagja a MBÁE-nek (Magyar Bőrgyógyász Állatorvosok Egyesülete).

0_nyitókép

Bevezetés

A kutyák atópiás bőrgyulladása (canine atopic dermatitis: CAD) az egyik leggyakoribb bőrgyógyászati kórkép a kisállatpraxisban, amely jelentős diagnosztikai és terápiás kihívást jelent az állatorvosok számára. A betegség jellemzően élethosszig tartó menedzsmentet igényel, ami szoros és hosszútávú tulajdonos–állatorvos együttműködést tesz szükségessé.
A CAD klinikai diagnózisának felállítását követően a hatékony, célzott kezelési stratégia kidolgozása érdekében kiemelt jelentőségű a tüneteket kiváltó vagy súlyosbító környezeti allergének pontos azonosítása. E célból az in vivo intradermalis allergiateszt (IDT) kulcsfontosságú diagnosztikai eszközként funkcionál. A mindennapi klinikai munka során gyakrabban alkalmazott in vitro allergénspecifikus IgE-szerológia (allergen specific IgE serology: ASIS) indikációja és célja megegyezik az IDT-ével. Mivel a két módszer esetén az allergénspecifikus immunterápia (allergen specific immunotherapy: ASIT) sikeressége nem különbözik, bármelyik megfelelő az ASIT allergénkészletének összeállításához. Alkalmazásukat a maguk előnyeit és hátrányait mérlegelve kell megválasztani – az adott páciens, a klinikai körülmények és a tulajdonos anyagi lehetőségei alapján.
Ez az összefoglaló gyakorlati megközelítésből próbál átfogó képet adni az intradermalis allergiateszt állatorvosi alkalmazásáról kutyák esetében, a szerző saját tapasztalata és az ide vonatkozó irodalom alapján (1. táblázat).

Az intradermalis allergiateszt célja, klinikai indikációi

Az IDT elsődleges célja az allergénspecifikus IgE által mediált I. típusú (azonnali) túlérzékenységi reakció kimutatása környezeti allergének szelektálásának gyakorlati célzatával, de a IV. típusú (késői) reakció vizsgálata is lehetséges így.

Fontos hangsúlyozni, hogy az IDT nem alkalmas a CAD diagnózisának felállítására. A diagnózis klinikai kritériumokon és differenciáldiagnosztikai eljárásokon alapul, amennyiben a pruritusszal járó egyéb fertőző és allergiás kórképek (bolhaallergiás dermatitis: FAD, eleségallergia: AFR) kizárása után a CAD lehetősége felmerül, az IDT segít pontosítani a kiváltó allergéneket. Az IDT kizárólag olyan betegeknél indikált, akiknél az atópia diagnózisa már klinikailag megalapozott. Soha nem szabad szűrővizsgálatként alkalmazni, hanem kizárólag arra a célra, hogy egy atópiás kutyában igazolja az IgE-mediált túlérzékenységet és feltárja annak pontos kiváltóit. A teszt eredményének értékelésekor minden esetben a kórelőzményi adatok segítségével kell figyelembe venni a pozitív reakciók valós relevanciáját.

Az IDT egyik legfontosabb gyakorlati indikációja az ASIT előkészítése, az eredmény alapján a kutya számára egyedre szabottan összeállítható olyan allergén keverék, mellyel hosszú távú hiposzenzibilizáló immunkezelés indítható. Az immunterápiás oldatba bekerülő allergének jellemzően azok, amelyekre a kutya pozitív reakciót mutat és amelyekkel a mindennapi környezetében valóban találkozik vagy találkozhat. Szakmai ajánlások tükrében allergiatesztet – legyen az intradermalis vagy szerológiai – általában csak akkor érdemes végezni, ha az eredményt az ASIT kialakításához fogjuk felhasználni. Ez az egyetlen oki terápiás lehetőség atópiás kutyák esetében, amely hosszú távon a tünetek csökkenéséhez és a gyógyszerigény mérsékléséhez vezethet. Sikerességi aránya megfelelő allergénválasztás esetén 50–70% körüli a szakirodalmi adatok alapján.

Az IDT elsősorban a környezeti allergének (aero- és kontakt allergének) felderítésénél, valamint rovarméreg-érzékenység kimutatásánál nyújthat információt. Eleségallergia gyanúja esetén nem használandó, az ilyen esetek diagnózisához eliminációs diéta és provokáció szükséges. Hasonlóképpen, bolhaallergiás dermatitis (FAD) esetén tesztelés helyett a célzott parazitaellenes kezelés az ajánlott eljárás. Az IDT leggyakrabban vizsgált allergénjei közé tartoznak a házi poratkák (Dermatophagoides fajok), tárolási- vagy spejzatkák (pl. Tyrophagus putrescantiae) a pollenek (füvek, gyomok, fák), penészgombák spórái, valamint emberi vagy állati hámképletek.

1. táblázat: In vivo allergiatesztek kutyáknál

Szezonális pruritus esetén, amikor a bőrtünetek egy meghatározott időszakhoz kötődnek, az IDT lehetővé teszi a releváns környezeti allergének azonosítását, ezzel segítve a célzott megelőzést (pollenekkel való kontaktus kerülése a kritikus időszakban) és az immunterápia vagy profilaktikus kezelés tervezését.

Ha az atópiás dermatitis tünetei súlyosak, kiterjedtek vagy az év jelentős részében (3 hónapnál hosszabb ideig) fennállnak, az allergiateszt elvégzése indikációt nyer. Az ilyen kutyáknak gyakran napi szintű kezelésre van szükségük és ha a klinikai tünetek nem kontrollálhatók megfelelően gyógyszeresen – esetenként rossz tulajdonosi együttműködés miatt –, dönthetünk a tesztelés mellett. Továbbá, ha hosszú távon az atópia menedzsmentje során alkalmazott gyógyszerek súlyos mellékhatásokat okozhatnak, akkor a feltárt allergénspektrum alapján lehetőség nyílik célzottabb, oki kezelés bevezetésére.

Ha egy kutya súlyos, életveszélyes túlérzékenységi reakciót mutat méh- vagy darázscsípés után, az intradermalis teszt igazolhatja a Hymenoptera-hiperszenzitivitást is.

Módszertan, az eljárás menete

Az IDT az állat habitusának függvényében bódítás nélkül is elvégezhető, de gyakran kerül sor enyhe szedálásra, különös tekintettel nagyobb számú allergénoldat injektálásakor. Kísérletesen leírtak lidokaingéles helyi érzéstelenítést a diszkomfortérzet csillapítása céljából, ez a gyakorlatban nem terjedt el.

A bódítás történhet többek között tiletamin/zolazepám, tiamilal, izoflurán, metoxifluran vagy medetomidin-hidroklorid hatóanyagokkal. Utóbbit, amely használata a leginkább javasolt, önmagában intravénásan alkalmaztuk a vizsgálatok során (5-10 μg/ttkg: Domitor®).

A morfin, acepromazin, oximorfon, ketamin/diazepam kombináció ellenjavallt, a propofol hatása ellentmondásos, használata kerülendő IDT során.

A bőrelváltozást nem mutató lateralis (általában bal oldali) mellkasfalról történő óvatos szőrnyírás követően felületi fertőtlenítés nem megengedett (1. kép).

A páciensnek a bőrteszt végzésekor fizikálisan olyan állapotban kell lennie, hogy az allergén oldatok ép bőrbe injektálása elvégezhető legyen, bőrtünetet mutató bőrfelület alkalmatlan erre.

Az allergénoldatok szúrási pontjait előzetesen sebészeti jelölő filc segítségével tervezhetjük, eltérő lehet ezeknek a száradási ideje, így érdemes 2-3 percet várni, hogy az elkenődést megelőzzük (2. kép).

Az injekciós pontok megjelölése után meghatározott koncentrációjú allergénkivonatokat (2. táblázat) injektálunk intradermálisan kis mennyiségben (0,05 ml). A befecskendezés helyén egy szabad szemmel azonnal látható duzzanat (vesiculum) keletkezik minden esetben szakszerű injektálás esetén (3. kép).

1. kép: Medetimidin-hidrokloriddal (iv.) nyugtatott állat az előkészítés során: a bal mellkason 10x15 cm-es terület lenyírása nullás-géppel, fertőtlenítés nélkül, száraz vattával letörölve
2. kép: Bőr megjelölése orvosi filc segítségével. A különböző jelölő filcek száradási ideje eltérő lehet, ezért érdemes 2-3 percet várni, hogy az elkenődést megelőzzük.
3. kép: Intracutan injekció beadása, szakszerű applikálás után egy szabad szemmel azonnal látható duzzanat (vesiculum) keletkezik a bőrben, (ami pár perc alatt ellapul, amint felszívódott az allergénoldat)

2. táblázat: Az általunk is használt allergénoldatok koncentrációja (Artuvetrin® Skin Test)

Az IDT azonnali típusú reakcióinak elbírálása 15–20 perccel később történik az indukált csalánkiütés (urticaria) mérete és a bőrpír (erythema) mértéke alapján (6-7. kép).

Az eredmény leolvasásáig nyugodt körülmények biztosítására, a tesztelés bőrterületének vakarástól vagy egyéb mechanikai behatástól történő védelmére van szükség. A kései típusú reakciók elbírálása jellemzően 4-6, 24, 48 és 72 elteltével történne. Ezeknek a reakcióknak a megítélését végezhetjük állatorvosi rendelőbe visszahívással, de gyakorlatiasabb a tulajdonos közreműködését kérni, esetlegesen fényképes dokumentációt az injektálás helyéről.

A teszt során negatív kontrollként fiziológiás sóoldatot, pozitív kontrollként pedig hisztamin-foszfátot (0,1 mg/ml) használunk.

Az allergének kiválasztása földrajzi, szezonális és környezeti sajátosságok alapján történik, mely során figyelembe kell venni a régió jellemző aeroallergénjeit.

A szerző 32 allergénoldatot tartalmazó tesztsort alkalmazott vizsgálatai során, ebből 30 önálló, 2 keverék reagens volt.

Eszközigény

Allergénoldatok beszerzésének lehetőségei kissé korlátozottak, globálisan standardizált oldatok nem kaphatók, az allergének koncentrációja különbözőségeket mutathat kontinensenként, csakúgy, mint az elérhető allergének palettája.

Hazánkban külföldről viszonylag könnyen beszerezhetőek az Artuvetrin® Skin Test reagensei, rövid szállítási idővel.

Az Artuvetrin® intracutan injekciós reagensek fiolánként 60 adagot tartalmaznak. A reagens 2 hónapon belül felhasználandó! Az allergének számát, panelek összeállítását a vizsgálatot végző állatorvos készíti elő. A hűtve tárolás és szállítás kulcsfontossággal bírhat, így a gyártó javaslatát szükséges betartani.

A környezeti allergének palettájának összeállítása nagy variábilitásra ad lehetőséget. A pollenek esetében (pázsitfüvek, fák és cserjék, gyomok és virágos növények, illetve termesztett növények csoportjából lehet választani), továbbá házipor- és tárolási atkák, penészek, állati hámképletek mellett bizonyos ízeltlábúak venomját tartalmazó allergénoldatok vannak forgalomban.

IDT tesztekhez 1 ml-es standard beosztású (tuberkulin) fecskendőt érdemes használni, a csavaros kialakítás (pl.: Omnifix-F) vagy gyárilag tűvel ellátott (pl.: Sol-M) változatok segíthetik a folyamatot (4. kép). Legideálisabb tűvastagság 27G (26G szintén alkalmas lehet), ezek a tűk elég vékonyak ahhoz, hogy ne okozzanak jelentős traumát a bőrbe fecskendezéskor, ugyanakkor elég stabilak a pontos, intradermális beadáshoz. A beadási pontok megjelöléséhez gyorsan száradó orvosi filc megfelelő.

3. táblázat: Téves pozitív intradermalis teszt lehetséges okai

4. kép: 1 ml-es tuberkulinfecskendő gyárilag tűvel vagy tű nélkül
5. kép:A bőrreakciók átmérőjének mérése objektív bírálathoz digitális tolómérővel

A bőrreakciók nagyságát egyszerű vonalzóval vagy tolómérővel is lemérhetjük (5. kép). Bizonytalan esetben a duzzanat átmérőjének megmérését sötét környezetben alkalmazott oldalfény megkönnyítheti.

Javasolt a teszt bírálata során digitális dokumentáció (fényképezés) készítése a kései reakciók közös kiértékelése és a későbbi összehasonlítás érdekében.

6. kép: A baloldali képen applikáció előtti állapot látható, a jobb oldali képet allergén beadást követően 10 perc elteltével készítettük, itt már láthatóak a bőrpír alapján az alakuló pozitív reakciók, de a bírálathoz 15-20 percnek el kell telnie
7. kép: IDT vizsgálat, 4 db pozitív (23, 25, 26, 32) eredménnyel, az alsó sorban a jobb legszélső a negatív (34), mellette a pozitív (33) kontroll látható

Eredmények értékelése

Az egyes tesztpontokon kialakuló duzzanatot és bőrpírt a pozitív és negatív kontrollhoz hasonlítjuk. Az eredményeket szubjektív vagy objektív (mm-ben) módon lehet értékelni, gyakorlott vizsgáló személy javasolt mindkét esetben.

Szubjektív módszer során a kialakult bőrpír nagysága, intenzitása és a duzzanat mérete alapján 0-4 skálán pontszámokat kap minden egyes intracutan reakció. Ebben az esetben a negatív kontroll a 0, a pozitív kontroll pedig a 4-es pontszámot kapja. A 2-es vagy annál nagyobb pontszámú reakció minősül pozitívnak.

Objektív értékelés esetén minden bőrreakció pontos átmérőjét megmérjük és rögzítjük. A bőrpír intenzitása alapján a reakciók „mértéke” szintén mm-re váltható. Pozitív eredményről akkor beszélünk, ha a duzzanat mérete eléri vagy meghaladja a negatív és a pozitív kontroll bőrreakcióinak átlagát. Objektív megközelítés előnyét határozottan nem állapították meg a szubjektívhez képest (8.és 9. kép).

8. kép: IDT vizsgálat, 4 db pozitív (23, 25, 26, 32) eredménnyel, az alsó sorban a jobb legszélső a negatív (34), mellette a pozitív (33) kontroll látható
9. kép: Objektív bírálathoz 15-20 perc közötti intervallumban a pozitív/kétes reakciókat körberajzoltuk a lemérés megkönnyítése érdekében

Megbízhatóság, korlátok

Az intradermalis bőrtesztet az állatorvosi bőrgyógyászok többsége referenciamódszernek tekinti az allergének azonosításában, mert a provokációra adott pozitív válasz a legbiztosabb igazolása a kórokozó allergénnek, s ezt a provokációt végezzük el tulajdonképpen az intradermalis bőrteszt alkalmával.

Ugyanakkor tisztában kell lenni a korlátaival, a módszer nem standardizált, előfordulhatnak téves pozitív és téves negatív eredmények is. Téves pozitív reakcióról akkor beszélünk, ha az IDT során pozitív bőrreakció jelentkezik olyan allergénnel szemben, amely valójában nem játszik klinikai szerepet az adott beteg tüneteinek kialakulásában.

A téves pozitív eredmények hátterében több tényező állhat (3. táblázat): túl magas allergénkoncentráció a kivonatban vagy nem megfelelő tesztelési technika irritatív reakciót válthat ki. Glicerintartalmú allergénoldatoknál tévesen pozitív reakciókról számoltak be. Egyes allergének strukturális hasonlósága miatt az IgE-antitestek keresztreagálhatnak több, klinikailag nem releváns allergénnel is. Egyedi érzékenység esetén a bőr mechanikai ingerlékenysége önmagában is duzzanatot, erythemát okozhat, valamint a pozitív és negatív kontrollok nem megfelelő értékelése téves következtetésekhez vezethet.

Az ellenkezője is igaz: téves negatív eredményről akkor beszélünk, ha a klinikailag atópiás dermatitis tüneteivel rendelkező kutyában az IDT nem mutat ki kóros reakciót, ez atópiás kutyák akár 10–30%-ában jelentkezhet, jelentős diagnosztikai és terápiás kihívást okozva. Ennek hátterében több tényező állhat (4. táblázat), mint a nem megfelelő tesztelési technika, reagenssel összefüggő hibák, helytelen időzítés, intrinszik eltérések a paciens immunválaszában és bizonyos gyógyszerhatások. Az olyan készítmények, amelyek gátolják a hisztaminreceptorokat vagy csillapítják az immunválaszt, gyakorlatilag téves negatív eredményhez vezethetnek, így megvonásuk és a megfelelő várakozási idők betartása különösen fontos IDT előtt (5. táblázat). Ezen gyógyszerek elhagyása ugyan átmenetileg növeli a kutya diszkomfortját, de elengedhetetlen a teszt megbízhatósága szempontjából. Ezzel szemben egyes immunszupresszáns szerek (pl. ciklosporin) esetében nincs szükség a kezelés megszakítására, mivel ezek kevésbé befolyásolják a mastocyták allergénspecifikus aktiválhatóságát. Az eddigi szakirodalmi adatok alapján az oklacitinib esetében nem feltétlenül szükséges a kezelés előzetes abbahagyása, mivel 14 napos alkalmazása atópiás kutyákban nem befolyásolta szignifikánsan az intradermalis teszt eredményeit, ugyanakkor egyes szakértői vélemények (pl. R. Mueller, T. Olivry) a tesztelés előtt 2 hetes szünetet javasolnak, bár erre vonatkozóan jelenleg nincs egyértelműen publikált, hivatkozható bizonyíték tudomásunk szerint.

Bizonyos mediátorok felszabadulásának gátlásával, sejtaktiváció mérséklésével elméleti síkon téves negatív eredmény elképzelhető, így opcionális elhagyása felmerülhet tesztelés előtt. Más JAK inhibitorok esetében (ilunocitinib, atinvicitinib) az összefoglaló írásakor hivatalos adat nem áll rendelkezésre IDT-re gyakorolt hatásukról. A tesztet megelőzően a kutya testfelületén ellenjavalt topikális készítményeket (kenőcsök, samponok, spray-ek) alkalmazni néhány napig, mivel ezek lokálisan befolyásolhatják a bőrreakciót. Általános szabály, hogy a szuka kutyát sem tüzelés, sem vemhesség idején nem vizsgáljuk, mert az ilyenkor megemelkedett progeszteronszint csökkentheti a mastocyták aktiválhatóságát, így téves negatív eredményt okozhat. Néhány altatószer csökkentheti a hisztaminhatást, ezért ajánlott előnyben részesíteni azokat a hatóanyagokat, amelyekről kimutatták, hogy az IDT-reakciókra kevésbé vannak hatással. Az optimális időzítés szintén lényeges, akkor érdemes a tesztet végezni, amikor az allergiás tünetek aktívak, illetve miután a kutya legalább egy teljes allergiaszezont átélt. Tünetmentes időszakban vagy túl fiatal korban végzett IDT téves negatív lehet. Mindezek miatt a teszt eredményét mindig a klinikai tünetek és kórtörténet összefüggésében kell értelmezni és nem szabad önmagában, abszolút érvényű igazságként kezelni. A gyakorlatban az allergiatesztek és a valós allergének közötti kapcsolat nem tökéletes. Az IDT és ASIS eredménye csak gyengén korrelál egymással. A szerológiai allergiatesztek és intradermalis tesztek gyakran egymást kiegészítve alkalmazhatóak, továbbá a molekuláris teszt segíthet az immunterápia pontosabb megtervezésében (komponens-alapú diagnosztika), míg az intradermalis teszt inkább a klinikai relevancia szűrője. A szerológia előnyt jelenthet, ha az intradermalis teszt nem kivitelezhető (pl. erősen pigmentált vagy épp gyulladt bőr, intoleráns, stresszes rizikópaciens vagy ha a kutya tulajdonosa nem járul hozzá a bódításhoz, vagy a szőrnyíráshoz).

Az intradermalis teszt eredményei akkor tekinthetők megbízhatónak, ha az előkészítés során lehetőség szerint minden zavaró tényezőt kizártak. Ritkán előfordulhatnak nem kívánt helyi vagy szisztémás reakciók: enyhe lokális pruritus, lokális vagy generalizált urticaria, még ritkábban anafilaxiás sokk. Mindig fel kell készülni azok sürgősségi ellátására, valamint az előzetes tulajdonosi tájékoztatás során ennek lehetőségére ki kell térni.

4. táblázat: Téves negatív intradermalis teszt lehetséges okai
5. táblázat: Gyógyszermegvonási idők, IDT tesztelés előtt

Összegzés

Az intradermalis allergiateszt hasznos diagnosztikai eszköz klinikus állatorvosok kezében, amellyel feltérképezhető egy atópiás kutya egyéni allergénérzékenységi profilja. Alkalmazásának célja nem a betegség diagnózisának felállítása, hanem a felelős allergének azonosítása a célzott terápia
– különösen az allergénspecifikus immunterápia (ASIT) – érdekében.

A szakirodalmi adatok és irányelvek megerősítik, hogy az IDT – bár a szerológiai vizsgálatok jóval gyakrabban kerülnek alkalmazásra a mindennapi gyakorlatban – továbbra is értékes alternatívát jelent az allergiatesztelés során, de csak fenntartásokkal kezelve.

Az indikációk közé tartozik minden olyan eset, ahol a klinikai kép alapján környezeti allergia gyanúja áll fenn – különösen, ha a tünetek szezonális mintázatot mutatnak, súlyosak vagy elhúzódóak –, valamint minden olyan beteg, akinél a hosszú távú megoldást az allergénspecifikus immunterápia jelentheti. Az IDT eredményei révén pontosítható az allergénprofil, célzottá válhat az immunterápia, így jelentősen javítható a betegek életminősége.

A kapott tesztreakciók értelmezése körültekintést igényel: megfelelő betegkiválasztás, alapos előkészítés, valamint gyakorlati tapasztalat elengedhetetlen, hogy az eredmények interpretálása valóban a beteg javát szolgálhassa.

 

Köszönetnyilvánítás:
A lektorálásért és szakmai támogatásért dr. Tarpataki Noéminek, a vizsgálatok során nyújtott segítségért pedig a Vezér Állategészségügyi Centrum valamennyi dolgozójának szeretnék köszönetet mondani.

  1. Aleksandrova S, Sofou EΙ, Badulescu E, Chatzis M, Saridomichelakis MN. Repeatability and reproducibility of the interpretation of intradermal test results in dogs with atopic dermatitis. Vet Dermatol. 2022;33: 527– 533.
  2. Badulescu E, Sofou EI, Aleksandrova S, Chatzis M, Saridomichelakis MN. Investigation of the diagnostic performance of prick test with two environmental allergens in dogs with atopic dermatitis: A study using intradermal test as the gold standard. Vet Dermatol. 2023;34:46– 52.
  3. Banovic F, Vargo C, Denley T. Effect of glycerin on immediate cutaneous reactions of histamine (positive) and phosphate-buffered saline (negative) controls in intradermal skin testing of healthy dogs: A randomised, blinded study. Vet Dermatol.2023;34:348– 354.
  4. Baretta LT, do Espírito Santo Cunha V, Figueiredo CD, Gerardi DG. A randomised, double- blinded trial to assess the effect of oclacitinib and prednisolone on intradermal allergen and prick tests in dogs with atopic dermatitis. Vet Dermatol. 2024;35:71–80.
  5. Chong E, Austel M, Banovic F. Evaluation of the correlation of serological and intradermal allergen testing with clinical history in 29 dogs with atopic dermatitis. Vet Dermatol. 2024;35:516–523.
  6. Fleischman DA, Morris DO. Pilot study to determine the concordance between skin prick and intradermal test (IDT) reactivity to environmental allergens in atopic dogs using IDT as the gold standard. Vet Dermatol. 2023;34:505–513.
  7. Foster AP, Littlewood JD, Webb P, Wood JL, Rogers K, Shaw SE. Comparison of intradermal and serum testing for allergen-specific IgE using a Fcepsilon RIalpha-based assay in atopic dogs in the UK. Vet Immunol Immunopathol. 2003;93(1-2):51–60.
  8. Hensel P, Santoro D, Favrot C, Hill P, Griffin C. Canine atopic dermatitis: detailed guidelines for diagnosis and allergen identification. BMC Vet Res 2015; 11: 196
  9. Hillier A, DeBoer DJ. The ACVD task force on canine atopic dermatitis (XVII): intradermal testing. Vet Immunol Immunopathol2001; 81: 289-304.
  10. Lewis ST, Kennis RA, Clark- Price SC, White AG. Influence of a single oral dose of trazodone on intradermal histamine reactivity in clinically healthy dogs. Vet Dermatol. 2024;35:62–70.
  11. Miller J, Simpson A, Bloom P, Diesel A, Friedeck A, Paterson T, Wisecup M, Yu CM. 2023 AAHA Management of Allergic Skin Diseases in Dogs and Cats Guidelines. J Am Anim Hosp Assoc. 2023 Nov;59(6):255-284. doi: 10.5326/JAAHA-MS-7396.
  12. Miller W., Griffin E. C., Campbell K.: Muller and Kirk’s Small Animal Dermatology, 7th Edition, 2013
  13. Moore A, Burrows AK, Rosenkrantz WS, Ghubash RM, Hosgood G. Modified rush venom immunotherapy in dogs with Hymenoptera hypersensitivity. Vet Dermatol. 2023;34:532–542.
  14. Morales-Romero R, Gonzalez-Dominguez MS, Sánchez J, Correa-Valencia NM, Maldonado-Estrada JG. Efficacy of diagnostic testing for allergen sensitization in canine atopic dermatitis: a systematic review. Front Vet Sci. 2025 May 21;12:1551207
  15. Nextmune B.V.: Artuvetrin Test [online]. Elérhető: https://nextmune.com/hubfs/PDF-archive/6585-21d05-artuvetrin-test-en.pdf (Letöltés dátuma: 2026.05.04.)
  16. Olivry T, Bizikova P. Evidence-based guidelines for anti-allergic drug withdrawal times before allergen-specific intradermal and IgE serological tests in dogs. Vet Dermatol. 2013;24(2):225-e49.
  17. Olivry T, Saridomichelakis M, International Committee on Atopic Diseases of A. Evidence-based guidelines for anti-allergic drug withdrawal times before allergen-specific intradermal and IgE serological tests in dogs. Vet Dermatol. 2013;24(2):225–e249.
  18. Park S, Ohya F, Yamashita K, Nishifuji K, Iwasaki T. Comparison of response to immunotherapy by intradermal skin test and antigen-specific IgE in canine atopy. J Vet Med Sci. 2000;62(9):983–8.
  19. Santoro D, Moura RA, McKenzie SR, Chiavaccini L. Equivalence in intradermal reactions to histamine and compound 48/80 in dogs before and after sedation with dexmedetomidine or a 1:20 combination of medetomidine and vatinoxan. Vet Dermatol.2025;36:43–51.
  20. Tham HL, Olivry T. Determination of the efficacy rate and time-to-efficacy of subcutaneous immunotherapy in dogs with atopic dermatitis. Vet Dermatol. 2022;33(2):155-e44.
  21. Tomich LM, Keating SCJ, Allender MC, Pieper JB. The effect of topical lidocaine on intradermal testing in atopic dogs. Vet Dermatol. 2021;32(2):139-e31.
  22. Vörös K. (szerk.): Állatorvosi belgyógyászat: A kutyák és macskák betegségei. Budapest, 2019, pp. 765-766.
  23. Widorn L, Zabolotski Y, Mueller RS. A prospective study evaluating the correlation between local weather conditions, pollen counts and pruritus of dogs with atopic dermatitis. Vet Dermatol. 2024;35:500–507.